Principais considerações de projeto para protocolos de estudo de validação de eliminação viral de produtos de terapia gênica

 

Os produtos de terapia genética, como uma nova geração de produtos biológicos, apresentam diferenças marcantes na avaliação da segurança viral em comparação com os produtos tradicionais de proteína recombinante. Os vetores de terapia genética (como vírus adeno{1}}associados recombinantes, AAV) são eles próprios de origem viral. Durante a fabricação, riscos únicos, como a contaminação por vírus auxiliares e a geração de vírus{3}competentes de replicação (RCV), representam desafios especiais para o projeto de estudos de validação de eliminação viral. Com base em diretrizes regulatórias oficiais, incluindo ICH Q5A(R2), NMPA, FDA e EMA, este artigo revisa sistematicamente as principais considerações de projeto para protocolos de estudo de validação de eliminação viral para produtos de terapia genética, abrangendo avaliação de risco, seleção de vírus indicador, projeto de modelo de redução de escala, configuração de condição de pior-caso, estudos de cinética de inativação, análise estatística e considerações especiais de processo. O objetivo é fornecer orientação técnica cientificamente sólida e em conformidade-regulatória para profissionais da área.

 

I. Aspectos únicos de segurança viral para produtos de terapia genética

 

Nos últimos anos, o campo da terapia genética tem registado progressos notáveis. A partir de 2025, vários produtos de terapia genética receberam aprovação de comercialização em todo o mundo, cobrindo áreas terapêuticas incluindo hemofilia, distrofia retiniana e atrofia muscular espinhal (AME). Entre eles, os vetores de vírus adeno{3}}recombinantes associados (rAAV) são a plataforma de terapia genética mais amplamente utilizada em aplicações clínicas. No entanto, a avaliação da segurança viral para produtos de terapia genética é fundamentalmente diferente daquela dos produtos tradicionais de proteína recombinante -o próprio vetor de terapia genética é um material de origem viral, o que impõe requisitos inteiramente novos no projeto de protocolos de validação de eliminação viral.

Produtos proteicos recombinantes tradicionais (por exemplo, anticorpos monoclonais) são normalmente fabricados usando linhas celulares bem{2}}caracterizadas, como CHO, onde os principais riscos de contaminação viral são retrovírus endógenos potencialmente alojados no banco de células (por exemplo, partículas semelhantes a retrovírus de roedores-em células CHO) e vírus adventícios que podem ser introduzidos inadvertidamente durante a fabricação. Em contraste, os produtos de terapia genética envolvem uma variedade de substratos celulares, incluindo células HEK293, HeLa e CHO. Mais importante ainda, o produto em si é um vetor viral e vários fatores de risco estão presentes durante a fabricação: contaminação por vírus auxiliares, geração de vetores-competentes de replicação (RCV/RCL) e integração do genoma do vetor no genoma do hospedeiro.

Em novembro de 2023, o Conselho Internacional para Harmonização de Requisitos Técnicos para Produtos Farmacêuticos para Uso Humano (ICH) adotou formalmente a diretriz Q5A(R2), que introduziu atualizações importantes na avaliação da segurança viral. Essas atualizações incluem um capítulo recém-adicionado sobre fabricação contínua (Capítulo 7), requisitos reforçados para avaliação de riscos e considerações mais específicas para novos produtos e processos de fabricação. A NMPA emitiu as Diretrizes Técnicas para Pesquisa Farmacêutica e Avaliação de Aplicações de Ensaios Clínicos para Produtos de Terapia Gênica In Vivo com Base em Vetor de Adeno{6}}Vírus Associado (rAAV)-recombinante em 2023, seguido em 2025 por Requisitos Técnicos Comuns para Qualidade Farmacêutica de Produtos de Terapia Gênica In Vivo Baseados em Vetor rAAV- para Solicitações de Autorização de Comercialização, ambos estabelecendo requisitos técnicos mais explícitos para avaliação de segurança viral de produtos de terapia genética de AAV.

Este artigo revisa sistematicamente as principais considerações de projeto para protocolos de estudo de validação de eliminação viral para produtos de terapia genética a partir de múltiplas perspectivas, incluindo o contexto regulatório, avaliação de risco, seleção de vírus indicador, projeto de modelo de redução-de escala, configuração de condição de pior-caso, estudos de cinética de inativação, análise estatística e considerações especiais de processo.

 

II. Visão Geral do Quadro Regulatório e Requisitos

1

ICH Q5A(R2)-Fundação Internacional de Harmonização

O ICH Q5A(R2) foi oficialmente adotado em 1º de novembro de 2023 e representa o principal documento de orientação internacional para avaliação de segurança viral. Em comparação com o Q5A(R1) publicado em 1999, as atualizações significativas na versão R2 incluem: um capítulo recém-adicionado sobre avaliação da segurança viral na produção contínua (Capítulo 7); um papel reforçado da avaliação de riscos como base das estratégias de eliminação viral; incorporação do sequenciamento de próxima{10}geração (NGS) nas considerações de detecção viral; e requisitos explícitos para a avaliação de novos produtos e processos de fabricação. O Q5A(R2) foi adotado pelas autoridades reguladoras, incluindo FDA, EMA e PMDA, fornecendo uma estrutura técnica unificada para validação da eliminação viral em todo o mundo.

2

NMPA-sistema regulatório chinês

O quadro regulamentar da NMPA para a segurança viral abrange vários níveis:

Nível do documento

Nome do documento

Ano de emissão

Documento fundamental

Diretrizes Técnicas para Remoção/Inativação de Vírus de Produtos Sanguíneos

2002

Documento fundamental

Princípios gerais para revisão técnica de avaliação de segurança viral de tecidos biológicos-produtos derivados e produtos expressos de células eucarióticas-

2005

Diretriz-específica do produto

Diretrizes Técnicas para Pesquisa Farmacêutica e Avaliação de Aplicações de Ensaios Clínicos para Produtos de Terapia Gênica In Vivo baseados em Adeno{0}}Vírus Associado (rAAV)-

2023

Diretriz-específica do produto

Requisitos técnicos comuns para qualidade farmacêutica de produtos de terapia gênica in vivo baseados em vetores de adeno{0}}vírus associados (rAAV) recombinantes para solicitações de autorização de comercialização

2025

Diretriz inovadora

Diretrizes Técnicas para Validação de Plataforma de Processos de Eliminação Viral para Aplicações em Ensaios Clínicos de Produtos Proteicos Recombinantes Terapêuticos (Ensaio)a

2024

a: Esta diretriz representa a primeira vez que a autoridade reguladora chinesa estabeleceu requisitos técnicos sistemáticos para validação de plataforma de processos de eliminação viral e está alinhada com o espírito do ICH Q5A(R2).

3

FDA e EMA-Requisitos regulatórios dos EUA e da Europa

A FDA emitiu formalmente um documento de orientação da indústria baseado no ICH Q5A(R2) em janeiro de 2024. Além disso, o capítulo da Farmacopeia dos Estados Unidos (USP)<1050.1>fornece orientação técnica suplementar sobre o desenho, avaliação e caracterização de procedimentos de eliminação viral. A FDA organiza um Simpósio de Eliminação Viral a cada dois anos; o simpósio de 2023 abordou-tópicos de ponta, como novas modalidades, fabricação contínua, novos meios de cromatografia e filtros adsortivos. Os principais documentos de orientação da EMA incluem CPMP/BWP/268/95 (Nota de orientação sobre estudos de validação de vírus: o desenho, contribuição e interpretação de estudos que validam a inativação e remoção de vírus) e EMEA/CHMP/BWP/398498/2005 (Diretriz sobre avaliação de segurança de vírus de produtos medicinais de investigação biotecnológica), ambos harmonizados com o ICH Q5A(R2).

III. Avaliação de risco-Fundamentos do design de protocolo

1

Identificação de fontes de contaminação viral

O ICH Q5A(R2) enfatiza que o desenho da validação da eliminação viral deve basear-se numa avaliação de risco abrangente. Para produtos de terapia genética, a identificação de fontes de contaminação viral deve abordar os seguintes níveis:

Nível do banco de células: vírus endógenos (por exemplo, partículas retrovirais) e vírus latentemente infecciosos potencialmente alojados nos substratos celulares de produção (por exemplo, HEK293, CHO, HeLa). Sabe-se que as células HEK293 contêm sequências Ad5 E1 endógenas e um fragmento de EBV de aproximadamente 900 pb e são capazes de expressar adenovírus{10}competentes para replicação; portanto, deve ser dada especial atenção a este risco na avaliação de riscos.

Nível de vírus auxiliar: a produção de vetores AAV normalmente emprega métodos como transfecção tripla usando plasmídeos auxiliares, que apresentam o risco de gerar adenovírus competente de replicação (RCA). Da mesma forma, células de empacotamento usadas na produção de vetores lentivirais podem gerar lentivírus competentes de replicação (RCL).

Nível de matérias-primas: Os vírus adventícios podem ser introduzidos através de matérias-primas utilizadas na fabricação, incluindo meios de cultura de células, rações e enzimas. Esse risco é particularmente significativo quando são usados ​​componentes-derivados de animais (por exemplo, soro fetal bovino, soluções digestivas de tripsina).

2

Diferenças de risco: terapia genética versus proteínas recombinantes tradicionais

Dimensão de Risco

Produtos Tradicionais de Proteína Recombinante

Produtos de terapia genética

Fonte viral

Vírus endógenos de banco de células; vírus adventícios

Vírus de banco de células; vírus auxiliares; vetores{0}competentes de replicação (RCV/RCL); integração do genoma hospedeiro

Substrato celular

CHO, NS0, Sp2/0 e outras linhas celulares bem{3}}caracterizadas

HEK293, HeLa, CHO, etc.; algumas linhagens celulares são de origem tumorigênica

Características do produto

Medicamento-à base de proteínas; estrutura bem-definida

Vetor viral; apresenta riscos de biossegurança

Estratégia de validação

Eliminação viral em-etapas múltiplas; ênfase na validação da etapa do processo

É necessária detecção de RCV/RCL; validação e testes essenciais

Validação de plataforma

Aplicável a processos estabelecidos como S/D, baixo pH, nanofiltração

Aplicabilidade limitada devido à diversidade de tipos de vetores

Tabela 1. Comparação de riscos de segurança viral: produtos de terapia genética versus produtos tradicionais de proteína recombinante

4. Estratégia de seleção de vírus indicadores

1

Princípios Gerais

A seleção de vírus indicadores é um elemento central na concepção de protocolos de validação de eliminação viral. O ICH Q5A(R2) exige que a seleção do vírus indicador seja baseada na avaliação de risco e leve em consideração os seguintes fatores:

Relevância do vírus para o substrato celular de produção (vírus relevante)

Propriedades físico-químicas do vírus (envelopado/não{0}}envelopado, DNA/RNA, faixa de tamanho)

Resistência do vírus a tratamentos físicos/químicos

Detectabilidade e biossegurança do vírus

Para produtos de terapia genética, a seleção de vírus indicadores deve considerar adicionalmente: o papel do próprio vírus vetor como um “vírus relevante”; o risco potencial de contaminação por vírus auxiliares; e os requisitos de detecção e validação para vírus{0}competentes de replicação (RCV/RCL).

2

Painel de vírus indicador recomendado

Vírus

Tipo

Envelope

Genoma

Tamanho (nm)

Justificativa de seleção/aplicação

MVM

Parvovírus

Nenhum

DNAss

18–26

Modelo-não envelopado; menor tamanho e maior resistência; adequado para validação de nanofiltração (geralmente não aplicável para produtos de vetor rAAV)

PPV

Parvovírus

Nenhum

DNAss

18–26

Modelo-não envelopado; vírus indicador comumente usado para produtos sanguíneos

Reo-3

Reovírus

Nenhum

dsRNA

60–80

Modelo-não envelopado; tamanho médio; alta estabilidade física

PRV

Herpesviridae

Sim

dsDNA

150–200

Modelo envelopado; tamanho grande; ampla gama de hosts

X-MuLV

Retrovírus

Sim

ssRNA

80–110

Modelo de retrovírus envelopado; apropriado para substratos celulares-derivados de CHO

BVDV

Flaviviridae

Sim

ssRNA

40–60

Modelo envelopado; usado para avaliar métodos de inativação química (substituto de HCV)

VSV

Rabdoviridae

Sim

ssRNA

70

Modelo envelopado; ampla tolerância ao pH; adequado para validação de inativação de-pH baixo

Tabela 2. Painel de vírus indicadores recomendados para validação de eliminação viral de produtos de terapia gênica

3

Considerações especiais para produtos vetoriais AAV

Para produtos de vetores de AAV recombinantes, as Diretrizes Técnicas da NMPA para Pesquisa Farmacêutica e Avaliação de Aplicações de Ensaios Clínicos para Produtos de Terapia Gênica In Vivo baseados em vetores de rAAV exigem atenção à detecção de AAV-competente de replicação (rcAAV). rcAAV refere-se a AAV capaz de replicação autônoma, que normalmente surge da recombinação homóloga entre o plasmídeo auxiliar e o genoma do produto AAV. A detecção de rcAAV é geralmente realizada utilizando ensaios infecciosos ou métodos qPCR, conduzidos separadamente na substância medicamentosa e no produto purificado.

Vale a pena notar que os processos de purificação a jusante para produtos de vetor AAV normalmente incluem digestão com nuclease, cromatografia (AEX), nanofiltração e cromatografia de troca iônica (CEX/IEX). Na validação tradicional da eliminação viral, estas etapas do processo podem resultar em perdas significativas do próprio vetor AAV; portanto, a interação entre o vetor e os vírus indicadores deve ser cuidadosamente considerada durante o projeto-de escala reduzida do modelo. Para certas etapas do processo (por exemplo, nanofiltração) onde as perdas do vetor AAV são substanciais, deve-se avaliar se os ajustes do processo são garantidos com base nos dados de validação (por exemplo, ajuste do tamanho dos poros da membrana de nanofiltração).

V. Dimensionar-o design e a qualificação do modelo

1

Princípios Gerais

O modelo-de escala reduzida (SDM) é a principal ferramenta para validação de liberação viral; seu design deve representar com precisão o desempenho da eliminação viral do processo de fabricação. O ICH Q5A(R2), Seção 6.2.2, exige explicitamente que o modelo de redução-mantenha consistência com o processo de fabricação nos principais parâmetros. Para produtos de terapia genética, as seguintes considerações são especialmente importantes no projeto de SDM:

2

Representatividade dos Parâmetros Críticos do Processo

O modelo-de redução de escala deve ser consistente com o processo de fabricação nos seguintes parâmetros: condições cromatográficas (composição do tampão, pH, condutividade); razão de carga (proporção de massa de proteína vetor/sobrenadante); tempo e temperatura de contato; vazão/tempo de residência; pureza e composição do produto. Para produtos AAV, o efeito da distribuição do tamanho das partículas vetoriais e do conteúdo do capsídeo vazio no desempenho da nanofiltração também deve ser abordado especificamente.

3

Requisitos de qualificação do modelo

O ICH Q5A(R2) exige qualificação adequada do modelo-de redução de escala, incluindo: comparação de atributos de qualidade do produto (por exemplo, pureza, recuperação, densidade); qualificação da consistência dos parâmetros críticos do processo; e garantir que o modelo-de redução de escala capture a variabilidade do processo de fabricação. Para as etapas de cromatografia, a consistência do perfil do pico, da eluição e da lavagem deve ser qualificada; para as etapas de nanofiltração, os efeitos da capacidade volumétrica e da composição do produto devem ser verificados.

VI. Pior-configuração de condição de caso

 

A definição das condições do pior-caso é um elemento crítico no projeto de protocolos de validação de eliminação viral. O princípio fundamental é: a validação deve ser conduzida sob condições menos favoráveis ​​para a eliminação viral, a fim de garantir que o processo de fabrico atinge o desempenho de eliminação viral pretendido em toda a gama normal de funcionamento.

 

Etapa do processo

Parâmetros Críticos do Processo

Princípios de definição do pior-caso

Inativação S/D

Concentração de solvente/detergente, temperatura, tempo de contato

Use limites-de concentração e temperatura mais baixos, tempo mínimo de contato e concentração máxima de proteína

Inativação de-pH baixo

pH, tempo de contato, temperatura, sistema tampão

Use o pH mais alto permitido, tempo de contato mínimo, tampão com capacidade tampão de pH mais baixa

Nanofiltração

Tipo de filtro, capacidade de volume, pressão de filtração

Use a capacidade máxima de volume especificada; pressão de filtração mais alta/mais baixa (os dados sugerem risco de avanço do vírus sob baixa pressão); amostra de maior viscosidade

Cromatografia

Capacidade de carga, pH, condutividade, tempo de residência

Utilize a capacidade máxima de carga; Combinação pH/condutividade menos favorável para eliminação viral

 

Tabela 3. Principais considerações para configuração de condição de pior-caso para cada etapa do processo

As Diretrizes Técnicas da NMPA para Validação de Plataforma de Processos de Eliminação Viral para Aplicações de Ensaios Clínicos de Produtos Proteicos Recombinantes Terapêuticos (Ensaio) listam explicitamente parâmetros de processo importantes para validação de plataforma na Tabela 1, incluindo tipo e concentração de solvente/detergente, tempo de incubação, temperatura, tipo de tampão, tipo de filtro, capacidade de volume e pressão/taxa de fluxo. Isso fornece uma referência técnica sistemática para a configuração das condições do pior-caso.

 

VII. Estudos de Cinética de Inativação

Os estudos de cinética de inativação são um meio importante de avaliar a eficácia das etapas do processo de inativação. As Diretrizes Técnicas da NMPA para Remoção/Inativação de Vírus de Produtos Sanguíneos exigem explicitamente que “a cinética de inativação do vírus deve ser investigada, incluindo a taxa de inativação viral e a curva de inativação”. Os estudos de cinética de inativação geralmente empregam uma abordagem de amostragem de vários-tempos-, em que as amostras são coletadas em diferentes momentos durante o processo de inativação, os títulos residuais do vírus são medidos e as curvas de inativação são traçadas.

A inativação com-pH baixo é um dos métodos de inativação mais comumente usados ​​para produtos de terapia genética. As condições típicas de inativação com pH baixo variam de pH 3,5 a 3,8, com tempos de incubação variando de 30 a 120 minutos. As curvas cinéticas de inactivação exibem tipicamente um padrão de "fase inicial rápida seguida por uma fase terminal lenta", isto é, a velocidade de reacção inicial é rápida e subsequentemente diminui. Se a taxa de inativação viral diminuir visivelmente ao longo do tempo, isso pode indicar que o método é ineficaz ou que o vírus indicador residual desenvolveu resistência ao método de inativação.

As condições típicas para inativação de S/D são 0,3% de TNBP + 1% Tween 80, incubado a 24 graus por pelo menos 6 horas, ou 0,3% de TNBP + 1% Triton X-100, incubado a 24 graus por pelo menos 4 horas. A inativação S/D é eficaz apenas contra vírus com envelope e não é eficaz contra vírus sem envelope (por exemplo, MVM, PPV). Nos processos de purificação a montante para produtos de terapia genética, a aplicação da inativação S/D é limitada pelo seu impacto potencial na atividade do vetor e geralmente não é utilizada como método primário de inativação viral; em vez disso, é aplicado para inativar vírus em outros intermediários do processo.

 

VIII. Análise Estatística e Cálculo do LRV

1

Fórmula de cálculo do LRV

O valor de redução logarítmica (LRV) é a métrica principal para medir a eficácia da eliminação viral. O ICH Q5A(R2), Seção 6.5, fornece uma descrição detalhada dos métodos de cálculo do LRV e do tratamento estatístico. A fórmula básica de cálculo do LRV é: LRV=log₁₀(N₀/N), onde N₀ é o título inicial do vírus após o pico do vírus e N é o título residual do vírus após o tratamento do processo. Quando o título residual do vírus cai abaixo do limite de detecção do ensaio, métodos de estimativa como a distribuição de Poisson devem ser usados ​​(por exemplo, testes de grande-volume).

2

Aplicação de intervalos de confiança

Tanto o ICH Q5A(R2) quanto o EMA CPMP/BWP/268/95 exigem avaliação do intervalo de confiança dos resultados do cálculo do LRV. Normalmente é aplicado um intervalo de confiança de 95%.

3

Critérios de Eficácia

De acordo com as Diretrizes Técnicas da NMPA para Remoção/Inativação de Vírus de Produtos Sanguíneos, uma redução de vírus maior ou igual a 4 logs indica que a etapa do processo é eficaz para remoção/inativação de vírus. No entanto, este critério não é um limiar absoluto e deve ser avaliado de uma forma holística juntamente com as curvas de cinética de inativação, a fundamentação científica para a seleção do vírus indicador e a solidez geral da conceção do protocolo de validação. No caso dos produtos de terapia genética, deve ser dada especial atenção à capacidade de depuração cumulativa em todas as etapas do processo, para garantir que o perfil global de segurança viral se encontra num nível aceitável.

IX. Considerações Especiais de Processo para Produtos de Terapia Gênica

1

Aplicação e Desafios da Nanofiltração

A-filtração retentiva de vírus (nanofiltração) é uma etapa crítica de eliminação viral na purificação posterior de produtos de terapia genética. Os filtros retentivos-de vírus típicos têm um tamanho de poro de aproximadamente 20 nm. O mecanismo de eliminação viral da nanofiltração baseia-se principalmente na exclusão-com base no tamanho e pode remover com eficácia a maioria dos vírus maiores que o tamanho dos poros da membrana, incluindo pequenos parvovírus não{6}}envelopados, como MVM e PPV.

No entanto, a nanofiltração para produtos de terapia genética enfrenta desafios únicos: o tamanho dos vetores AAV (aproximadamente 20–26 nm) é semelhante ao de certos vírus indicadores (por exemplo, MVM, 18–26 nm), o que pode resultar na redução da recuperação do vetor; capsídeos vazios podem afetar o fluxo de filtração e a eficiência da retenção viral; a viscosidade da amostra pode aumentar significativamente com a concentração do vetor. Portanto, o projeto SDM para validação de nanofiltração deve levar em conta totalmente os efeitos da distribuição do tamanho das partículas do vetor e do conteúdo do capsídeo vazio no desempenho da filtração, e deve-se considerar o uso de membranas de nanofiltração com tamanhos de poros maiores, conforme apropriado.

2

Avaliação de eliminação viral de etapas de cromatografia

A cromatografia de troca iônica (IEX) é uma etapa central nos processos de purificação de produtos AAV, normalmente empregando digestão com nuclease seguida por cromatografia de troca aniônica (AEX) para capturar capsídeos vazios e defeituosos, ou cromatografia de troca catiônica (CEX) para purificação fina de capsídeos completos. Os mecanismos de eliminação viral nas etapas de cromatografia incluem exclusão de tamanho, interações eletrostáticas, interações de afinidade e outros fatores. As discussões no Simpósio de Eliminação Viral da FDA de 2023 destacaram que a eficácia da eliminação viral das etapas de cromatografia é influenciada por vários fatores, incluindo capacidade de carga, pH, condutividade e ciclagem de resina; uma abordagem de projeto ortogonal multifatorial deve ser adotada para uma avaliação abrangente.

3

Controle de segurança viral na fabricação contínua

O recém-adicionado Capítulo 7 do ICH Q5A(R2) estabelece requisitos específicos para avaliação de segurança viral na fabricação contínua. Para produtos de terapia genética, a fabricação contínua tornou-se uma importante direção de desenvolvimento, mas também introduz novos desafios de segurança viral. As estratégias de controle de segurança viral na fabricação contínua incluem:-filtros de barreira contra vírus em linha como medidas críticas de contenção; projeto apropriado de tempos de residência e fluxos de processo; incorporação de etapas de inativação com tempos de espera definidos; e aplicação aprimorada de tecnologia analítica de processo (PAT) para monitoramento-em tempo real de parâmetros críticos do processo.

X. Conclusões e perspectivas

 

O projeto de protocolos de validação de liberação viral para produtos de terapia genética requer abordagens individualizadas dentro da estrutura do ICH Q5A(R2), adaptadas às características{2}específicas do produto e aos requisitos regulatórios. Em comparação com produtos de proteína recombinante tradicionais, a avaliação da segurança viral para produtos de terapia genética exige atenção especial aos riscos adicionais decorrentes das propriedades específicas do vetor-(RCV/RCL), às interações entre vetores e vírus indicadores e ao impacto de novos processos de purificação na eliminação viral.

Olhando para o futuro, várias direções merecem atenção: a aplicação ampliada da validação de plataforma, em particular o caminho técnico claro fornecido pelas diretrizes de validação de plataforma emitidas pela NMPA; a aplicação do sequenciamento-de próxima geração (NGS) na detecção viral, o que aumentará a amplitude e a sensibilidade da detecção viral; o refinamento contínuo das estratégias de controle de segurança viral na fabricação contínua à medida que o desenvolvimento do processo avança; e o desempenho de eliminação viral de novos meios de cromatografia e filtros adsortivos, que fornecerão opções técnicas adicionais para produtos de terapia genética.

 

Referências

 

  • ICH Q5A(R2). Avaliação da Segurança Viral de Produtos Biotecnológicos Derivados de Linhagens Celulares de Origem Humana ou Animal. Adotado em 21 de novembro de 2023.
  • NMPA. Diretrizes técnicas para pesquisa farmacêutica e avaliação de aplicações de ensaios clínicos para produtos de terapia genética in vivo baseados em-vetor de vírus adeno-associado (rAAV){2}}recombinante. 2023.
  • NMPA. Requisitos técnicos comuns para qualidade farmacêutica de produtos de terapia gênica in vivo baseados em adeno{1}}vírus associados (rAAV) recombinantes para solicitações de autorização de comercialização. 2025.
  • NMPA. Diretrizes Técnicas para Validação de Plataforma de Processos de Eliminação Viral para Aplicações de Ensaios Clínicos de Produtos Proteicos Recombinantes Terapêuticos (Ensaio). Fevereiro de 2024.
  • NMPA. Diretrizes Técnicas para Remoção/Inativação de Vírus de Produtos Sanguíneos. Guoyao Jian Zhu [2002] Não. 160. 2002.
  • NMPA. Princípios Gerais para Revisão Técnica de Avaliação de Segurança Viral de Tecido Biológico-Produtos Derivados e Células Eucarióticas-Produtos Expressos. 2005.
  • EMEA. CPMP/BWP/268/95. Nota para orientação sobre estudos de validação de vírus: o desenho, contribuição e interpretação de estudos que validam a inativação e remoção de vírus. Adotado em 14 de fevereiro de 1996.
  • EMEA. EMEA/CHMP/BWP/398498/2005. Diretriz sobre Avaliação da Segurança Viral de Medicamentos Biotecnológicos de Investigação. Julho de 2008.
  • QUEM. Diretrizes sobre procedimentos de inativação e remoção viral destinados a garantir a segurança viral de produtos de plasma sanguíneo humano. OMS TRS 924, Anexo 4. 2004.
  • Roush D, Bolton G. Procedimentos do Simpósio de Eliminação Viral de 2023. PDA J Pharm Sci Technol, 2024, 78(2): 131–155.
  • USP.<1050.1>Projeto, avaliação e caracterização de procedimentos de eliminação viral.
  • NMPA. Principais considerações para estudos de controle de qualidade de produtos de terapia genética. 2023.

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